Micología
Líneas de investigación
Contenidos con Investigacion .
Estudio de la relación exposición y respuesta en el tratamiento con antifúngicos
Micología
Nuevos antifúngicos y aspergilosis crónicas.
Epidemiología, resistencia y actividad de nuevos antifúngicos
El conocimiento de la epidemiología y la tasa de resistencia a los antifúngicos es esencial para un manejo adecuado de los pacientes y una estrategia de detección y diagnostico apropiada. La resistencia a los antimicrobianos es hoy una de las mayores amenazas para la salud mundial siendo el desarrollo y comercialización de nuevos compuestos una de las prioridades del sector de la salud. Se han realizado en colaboración con centros del Sistema Nacional de Salud varios estudios poblacionales, con el fin de conocer la epidemiología de los hongos filamentosos en España y la tasa de resistencia a los antifúngicos. Se ha encontrado que más de un 10% de las infecciones por hongos filamentosos están producidas por especies crípticas que suelen ser más resistentes a los antifúngicos. En los últimos años han aparecido varios compuestos con capacidad antifúngica que están en diferentes fases de desarrollo, en nuestro grupo se ensayan estos nuevos compuestos frente a los principales géneros de especies patógenas, incluyendo las especies crípticas multiresistentes.
Aspergilosis Pulmonar Crónica y Aspergilosis Broncopulmonar alérgica
Estas enfermedades ocurren generalmente en personas inmunocompetentes. La incidencia de estas enfermedades es prácticamente desconocida. La ausencia de un diagnóstico apropiado y del tratamiento óptimo complica el manejo de estos pacientes. Varios estudios han documentado la presencia de cepas multiresistentes en estos pacientes, debido a tratamiento prolongados. En esta línea se está trabajando en mejorar el algoritmo diagnóstico de estas enfermedades, así como analizar la epidemiología de las especies aisladas en estas infecciones y la influencia de cambios en el micobioma pulmonar y ambiental.
Enfermedades fúngicas y Salud global
Muchos países de renta media y baja se encuentran en zonas de alta incidencia de hongos, sin embargo, tienen menos herramientas y capacidad diagnóstica para manejarlas. Con el fin de conocer la incidencia de las infecciones oportunistas por hongos y disminuir la muerte asociada a las mismas en pacientes que viven con VIH en Guatemala y en colaboración con el Fondo de acción Global para las infecciones fúngicas (GAFFI), se ha desarrollado una red de unidades de atención integral al sida e implementado un laboratorio central de diagnóstico, que hace de referencia para el diagnóstico en varias infecciones oportunistas. Se ha hecho un estudio de cohortes incluyendo a más de 2500 pacientes HIV+ con un seguimiento de un año. Se han tamizado las principales infecciones fúngicas en este grupo de pacientes permitiendo el acceso al diagnóstico y al tratamiento de las mismas en la mayor parte del país y consiguiendo una disminución de mortalidad en un año del 7%.
Mecanismos de Resistencia de Aspergillus fumigatus a los antifúngicos
Aspergillus fumigatus es un hongo patógeno oportunista de distribución universal, que tiene una incidencia mundial muy significativa y una mortalidad elevadísima. El uso extensivo y generalizado de los antifúngicos ha originado la aparición de A. fumigatus resistentes a los mismos, ocasionando graves consecuencias para los pacientes infectados por estos aislados que ven reducidas sus opciones terapéuticas.
Inicialmente la aparición de cepas resistentes fue muy esporádica y mostraban mutaciones puntuales en zonas clave del enzima Cyp51A (G54, G138, F219, M220, G448S) en las cepas que se aislaban en pacientes sometidos a tratamientos de larga duración con azoles. Esta ruta clínica es debida a la presión selectiva que los azoles ejercen sobre A. fumigatus en el interior del paciente. Sin embargo, desde el año 2014 la resistencia ha crecido de manera notable y casi todas las cepas de A. fumigatus resistentes a los azoles tienen un mecanismo combinado de modificaciones en el promotor y la parte codificante de cyp51A (TR34/L98H o TR46/Y121F/T289A) y que, con una elevada frecuencia, se detectan en pacientes que jamás han sido expuestos a terapia antifúngica. En estos casos se plantea la implicación de una ruta ambiental en la que la exposición no intencionada de A. fumigatus a DMIs en el campo estaría favoreciendo la aparición de aislados resistentes.
Origen y Evolución de la Resistencia de A. fumigatus a los antifúngicos
Hoy en día, el aislamiento de cepas de A. fumigatus resistentes a antifúngicos es una emergencia global en aumento. Se cree que la exposición continuada de A. fumigatus a fungicidas ambientales, utilizados para la protección de cultivos contra otras especies de hongos que causan daños agrícolas, está seleccionando cepas resistentes a múltiples fármacos. Los principales mecanismos de resistencia a los azoles en A. fumigatus son cepas con modificaciones de la diana de los azoles (gen cyp51A), principalmente el TR34/L98H, seguido por TR46/Y121F/A289T. Ambos tipos de mecanismos son responsables de la resistencia a todos los azoles y cruzada a los DMI utilizados para la protección de cultivos (imidazoles y triazoles). Más recientemente, también se ha reconocido la resistencia a varias clases de fungicidas como, Bencimidazoles (MBC), Estrobilurinas (QoIs), inhibidores de la sucinato deshidrogenasa (SDHIs) y Dicarboximidas.
La caracterización genomica (NGS) de cepas procedentes tanto de origen clínico como ambiental permite vincular las diferencias del genoma con la adquisición de resistencia a distintos fungicidas. Al añadir los datos de susceptibilidad a antifúngicos no azólicos se puede observar una imagen más precisa de las relaciones filogenéticas entre las cepas ya que se forman distintos subclados en los que coinciden las cepas multirresistentes a los antifúngicos no azólicos, con cepas resistentes a los azoles con los mecanismos TRs. Esta formación de clados específicos con cepas que difieren en cuanto a origen geográfico y año de aislamiento sugiere la existencia de un nexo común, un punto de origen evolutivo según el cual las cepas se han desarrollado bajo unas circunstancias similares que confluyen en una serie de mecanismos de multirresistencia a fungicidas de distintas familias. Los funqicidas no azolicos son de uso exclusivo ambiental, y la resistencia de A. fumigatus a los mismos confirma que las cepas con mecanismo de resistencia a TRs, se seleccionan y desarrollan en el ambiente donde se ven expuestos a la presión selectiva de múltiples fungicidas.
Se cree que las cepas con mecanismos TRs podrían estar asociadas a una ventaja evolutiva o mejora en su "fitness" que pueda favorecer su supervivencia y dispersión en un ambiente muy cargado de fármacos. Esta tendencia de las cepas a adquirir multitud de mutaciones responsables de resistencia a varias familias de fármacos nos ha hecho explorar las alteraciones de los genes de la vía de reparación del ADN.
Tolerancia y persistencia a los antifúngicos azólicos en Aspergillus fumigatus
La tolerancia y la persistencia son dos fenómenos por los cuales los organismos patógenos pueden sobrevivir la acción microbicida de antimicrobianos que deberían matarlos durante un período de tiempo extendido. En el laboratorio investigamos la capacidad de algunos aislados de A. fumigatus de mostrar tolerancia y persistencia a los azoles, primera línea de tratamiento antifúngico contra las infecciones de aspergilosis. Por una parte, desarrollamos metodología para detectar e investigar la tolerancia/persistencia, tanto en el laboratorio como en diagnóstico clínico. Con estos métodos estamos estudiando los mecanismos moleculares y genómicos subyacentes que posibilitan estos fenómenos. Por último, estamos investigando la potencial relevancia de la tolerancia y la persistencia en la eficacia del tratamiento antifúngico.
Modulación diferencial de la persulfidación en el hongo y el hospedador como nueva estrategia antifúngica
La persulfidación es una modificación postraduccional en la cual un grupo sulfuro activado (S2), mediante la acción de una enzima, realiza un ataque nucleofílico específico sobre grupos tiol (-SH) de residuos cisteína en proteínas diana para formar un grupo persulfido (-SSH). Se ha demostrado que esta alteración modula la actividad intrínseca de las proteínas, resultando en un papel relevante en diversos mecanismos celulares y funciones fisiológicas. En nuestra investigación previa demostramos que niveles correctos de persulfidación son importantes tanto para la virulencia de A. fumigatus, como para la orquestación de una respuesta inmunitaria adecuada en el hospedador. Por tanto, en esta línea de investigación estudiamos la hipótesis de que la modulación diferencial de la persulfidación puede constituir una nueva estrategia para el tratamiento antifúngico. Por una parte, estamos investigando la capacidad de compuestos de inhibir la acción de enzimas fúngicas que realizan la persulfidación, con el objetivo de reducir los niveles de persulfidación y por tanto disminuir la virulencia de A. fumigatus. Por otra parte, estudiamos el uso de donadores de sulfuro como potenciales vías para incrementar la persulfidación en las células pulmonares del hospedador, con el objetivo de potenciar la respuesta inmunitaria.
Evolución de las resistencias cruzadas a los nuevos antifúngicos olorofim y manogepix
La resistencia a los azoles se encentra ya presente a nivel global. Se ha demostrado que los mecanismos de resistencia más comunes (consistentes en la repetición en tándem de secuencias en el promotor del gen que codifica la diana de los azoles) se han desarrollado en el campo, debido a la utilización indiscriminada de pesticidas de la misma familia que los azoles clínicos. En este momento, existen dos nuevos antifúngicos clínicos con nuevos mecanismos de acción molecular, el olorofim y el manogepix. Sin embargo, también se han desarrollado análogos para su uso como pesticidas, con el mismo mecanismo de acción, el ipflufenoquin y el aminopyrifen. Por tanto, estamos en riesgo de cometer el mismo error que con los azoles. En este proyecto de colaboración internacional, estudiamos la evolución de resistencias y cros-resistencias a estos antifúngicos clínicos y ambientales, con el objetivo de poder diseñar estrategias para minimizar la aparición de resistencias en el ambiente y para desarrollar métodos de detección temprana de las resistencias.
Susceptibilidad del huésped a las infecciones fúngicas invasoras
Se estima que más de un millón y medio de personas mueren al año en el mundo debido a una enfermedad fúngica invasora (EFI). Los tratamientos con inmunosupresores, terapias con corticoides, trasplantes de células hematopoyéticas y órgano sólido así como tratamientos quimioterapéuticos contra el cáncer han favorecido el aumento de estas infecciones fúngicas. El género Aspergillus es la principal causa de EFI por hongos filamentosos, siendo A. fumigatus la especie principalmente aislada en la mayoría de los casos y más frecuentemente asociada a Aspergilosis Invasora.
Muchas de estas infecciones están infra-diagnosticadas debido, tanto a la falta de sospecha clínica como a las limitaciones diagnósticas. Esta línea de investigación tiene como principal objetivo mejorar el pronóstico de la infecciones en pacientes con riesgo de desarrollar infecciones invasoras por hongos. Para ello se estudian marcadores del individuo (denominados biomarcadores del hospedador) que puedan ser detectados de forme temprana en muestras de pacientes en riesgo y que nos permita estratificar a los mismos en función de la susceptibilidad a desarrollar una infección invasora por hongos. Además, estudios realizados en los últimos años muestran que el fondo genético del hospedador está asociado con la predisposición al desarrollo de este tipo de enfermedades. En concreto se han identificado polimorfismos genéticos de nucleótido simple (“Single Nucleotide Polymorphism”- SNP) en genes que codifican para componentes celulares que interaccionan con estructuras fúngicas y/o que están involucradas en la respuesta inmune del huésped frente a agentes infecciosos como Aspergillus. En este sentido se han estandarizado y aplicado herramientas para la detección de SNPs en humanos de genes diana asociados concretamente con la susceptibilidad a la Aspergilosis Invasora.
Estudio de los mecanismos de virulencia en Aspergillus fumigatus
En paralelo al estudio de la respuesta del hospedador se sigue una línea cuyo objetivo es caracterizar mecanismos de virulencia en A. fumigatus. Uno de los principales mecanismos por los que A. fumigatus es capaz de causar enfermedad en humanos es su capacidad de adaptarse a las condiciones ambientales del hospedador. Entre las moléculas y los genes que se han relacionado con la virulencia de este hongo se encuentran componentes de la pared celular, genes y moléculas relacionadas con la evasión de la respuesta inmune, sistemas de detoxificación de los compuestos derivados del oxígeno, la producción de toxinas, la obtención de nutrientes como hierro, fósforo, nitrógeno y la adaptación a pH y temperatura del hospedador. Estos estudios permiten profundizar en el conocimiento sobre la patogenicidad de este hongo e identificar nuevas dianas terapéuticas
Mecanismos de adaptación de hongos patógenos al huésped: Morfogénesis en Cryptococcus neoformans
Uno de los principales mecanismos por los que los hongos son capaces de causar enfermedad en humanos es su capacidad de evadir la respuesta inmune y adaptarse a las condiciones ambientales que se encuentra en el huésped. En este sentido, una de las levaduras tiene que mayor capacidad de adaptación al huésped es Cryptococcus neoformans. Este hongo se encuentra en el ambiente, y se adquiere por inhalación, aunque el cuadro más típico es meningitis en pacientes inmunodeprimidos, principalmente VIH+. La principal característica fenotípica es la presencia de una cápsula de polisacárido que rodea a la célula que es considerado un factor de virulencia. Además, C. neoformans es capaz de aumentar el tamaño celular significativamente formando células “titanes”, que pueden alcanzar un diámetro de más de 70 micras. En el laboratorio estamos interesados en conocer cual es el papel de estos las células titanes en la virulencia de C. neoformans. Recientemente, hemos descrito medios in vitro en los que C. neoformans forma células pseudo-titanes, lo que nos ha permitido identificar nuevos factores y rutas involucradas en este proceso.
Mecanismos de acción a antifúngicos
En paralelo, llevamos una línea cuyo principal objetivo es caracterizar los mecanismos de acción de los antífúngicos. En concreto, se ha centrado el trabajo en el efecto de la Anfotericina B (AmB). Durante décadas se ha pensado que este antifúngico causa la muerte de las células tras la unión a ergosterol y formación de poros. Nuestros resultados indican que este antifúngico induce también un fuerte estrés oxidativo en la célula, el cual ocurre antes de que se pierda la integridad celular. Además hemos comprobado que el estrés oxidativo es necesario para la acción fungicida de la AmB. Estos resultados abren la puerta a diseñar nuevas estrategias que mejoren su eficiencia en pacientes.
Nuevas estrategias terapéuticas
El trabajo con AmB ha derivado en investigación orientada a mejorar las terapias antifúngicas. En particular, hemos utilizado la estrategia del reposicionamiento de fármacos “off-patent” para buscar nuevas actividades. Usando este abordaje, hemos identificado varios fármacos que aumentan la efectividad de la AmB frente a las principales levaduras patógenas, como el antibiótico eritromicina. Este abordaje nos ha permitido identificar fármacos con actividad antifúngica frente a patógenos emergentes, como Candida auris.
El diagnóstico de la infección fúngica invasora (IFI) es complicado y con frecuencia se retrasa ya que en muchas ocasiones a la falta de sospecha clínica se le suma la falta de herramientas diagnósticas eficaces. Esta línea de investigación se inició en el año 2003, primero liderada por el Dr. Manuel Cuenca-Estrella y posteriormente por la Dra. María José Buitrago con el objetivo general de desarrollar nuevas herramientas, basadas en la PCR en tiempo Real, para un diagnóstico rápido de IFI. Los objetivos concretos que se han ido alcanzando a lo largo de estos años han sido los siguientes:
Detección precoz de hongos causantes de infecciones fúngicas oportunistas más frecuentes en pacientes inmunodeprimidos (Aspergilosis y Candidiasis invasoras)
Se han desarrollado y validado técnicas de PCR en tiempo Real en formato multiplex para el cribado de pacientes en riesgo de padecer estas infecciones, así como para el diagnóstico en pacientes con sospecha.
Detección de IFIs causadas por hongos emergentes (Escedosporiosis, Fusariosis etc...)
El aumento de especies raras o poco frecuentes causantes de IFI hizo necesario el desarrollo de técnicas para su detección
Detección “panfúngica”
Para aquellos casos en los que no exista evidencia clara del hongo causante de la infección se han desarrollado técnicas basadas en PCR en tiempo Real.
Mejora del diagnóstico y la identificación de los hongos causantes de micosis importadas (micosis endémicas)
Debido al aumento de la inmigración y los viajes a lugares exóticos en los últimos años se ha producido un incremento de las micosis importadas en España, en concreto de aquellas causadas por hongos endémicos de determinadas regiones, los cuales son además patógenos primarios. Este objetivo es relevante en el contexto de una región no-endémica ya que existe falta de experiencia en el manejo de estas infecciones y las técnicas diagnósticas disponibles son muy escasas. A lo largo de estos años se han desarrollado y validado distintas técnicas para el diagnóstico rápido de estas micosis y se han realizado diferentes trabajos encaminados a un mejor conocimiento de los hongos que las causan.
Las técnicas desarrolladas a lo largo de estos años se han incorporado a la Cartera de Servicios del Centro Nacional de Microbiología para ofrecerlas al Sistema Nacional de Salud. Además, algunas de ellas se han patentado.
Publicaciones destacadas
Cryptococcus neoformans can form titan-like cells in vitro in response to multiple signals
2. Trevijano-Contador N, de Oliveira HC, García-Rodas R, Rossi SA, Llorente I, Zaballos Á, Janbon G, Ariño J, Zaragoza Ó. Cryptococcus neoformans can form titan-like cells in vitro in response to multiple signals. PLoS Pathog. 2018 May 18;14(5):e1007007.
PUBMED DOIReclassification of the Candida haemulonii complex as Candida haemulonii (C. haemulonii group I), C. duobushaemulonii sp. nov. (C. haemulonii group II), and C. haemulonii var. vulnera var. nov.: three multiresistant human pathogenic yeasts
4. Cendejas-Bueno E, Kolecka A, Alastruey-Izquierdo A, Theelen B, Groenewald M, Kostrzewa M, Cuenca-Estrella M, Gómez-López A, Boekhout T. Reclassification of the Candida haemulonii complex as Candida haemulonii (C. haemulonii group I), C. duobushaemulonii sp. nov. (C. haemulonii group II), and C. haemulonii var. vulnera var. nov.: three multiresistant human pathogenic yeasts. J Clin Microbiol.
PUBMED DOIMolecular Identification and Susceptibility Testing of Molds Isolated in a Prospective Surveillance of Triazole Resistance in Spain (FILPOP2 Study).
5. Alastruey-Izquierdo A, Alcazar-Fuoli L, Rivero-Menéndez O, Ayats J, Castro C, García-Rodríguez J, Goterris-Bonet L, Ibáñez-Martínez E, Linares-Sicilia MJ, Martin-Gomez MT, Martín-Mazuelos E, Pelaez T, Peman J, Rezusta A, Rojo S, Tejero R, Anza DV, Viñuelas J, Zapico MS, Cuenca-Estrella M; the FILPOP2 Project from GEMICOMED (SEIMC) and REIPI. Molecular Identification and Susceptibility Testing of Molds Isolated in a Prospective Surveillance of Triazole Resistance in Spain (FILPOP2 Study). Antimicrob Agents Chemother. 2018 Aug 27;62(9).
PUBMED DOIEvaluation of Bronchoalveolar Lavage Fluid Cytokines as Biomarkers for Invasive Pulmonary Aspergillosis in At-Risk Patients
6. Gonçalves SM, Lagrou K, Rodrigues CS, Campos CF, Bernal-Martínez L, Rodrigues F, Silvestre R, Alcazar-Fuoli L, Maertens JA, Cunha C, Carvalho A. Evaluation of Bronchoalveolar Lavage Fluid Cytokines as Biomarkers for Invasive Pulmonary Aspergillosis in At-Risk Patients. Front Microbiol. 2017 Nov 29;8:2362.
PUBMED DOIPolymorphisms in Host Immunity-Modulating Genes and Risk of Invasive Aspergillosis: Results from the AspBIOmics Consortium
7. Lupiañez CB, Canet LM, Carvalho A, Alcazar-Fuoli L, Springer J, Lackner M, Segura-Catena J, Comino A, Olmedo C, Ríos R, Fernández-Montoya A, Cuenca-Estrella M, Solano C, López-Nevot MÁ, Cunha C, Oliveira-Coelho A, Villaescusa T, Fianchi L, Aguado JM, Pagano L, López-Fernández E, Potenza L, Luppi M, Lass-Flörl C, Loeffler J, Einsele H, Vazquez L; PCRAGA Study Group, Jurado M, Sainz J. Polymorphisms in Host Immunity-Modulating Genes and Risk of Invasive Aspergillosis: Results from the AspBIOmics Consortium. Infect Immun. 2015 Dec 14;84(3):643-57.
PUBMED DOICell Wall Changes in Amphotericin B-Resistant Strains from Candida tropicalis and Relationship with the Immune Responses Elicited by the Host.
9. Mesa-Arango AC, Rueda C, Román E, Quintin J, Terrón MC, Luque D, Netea MG, Pla J and Zaragoza O. Cell Wall Changes in Amphotericin B-Resistant Strains from Candida tropicalis and Relationship with the Immune Responses Elicited by the Host. Antimicrob. Agents Chemother. 2016. 60(4):2326-35.
PUBMED DOIComparison of two highly discriminatory typing methods to analyze Aspergillus fumigatus azole resistance
Garcia-Rubio R, Escribano P, Gomez A, Guinea J, and Mellado E. Comparison of two highly discriminatory typing methods to analyze Aspergillus fumigatus azole resistance. Frontiers in Microbiology 2018. Jul 20;9:1626.
PUBMED DOIEvaluation of the possible influence of trailing and paradoxical effects on the clinical outcome of patients with candidemia.
Rueda C, Puig-Asensio M, Guinea J, Almirante B, Cuenca-Estrella M, Zaragoza O. Evaluation of the possible influence of trailing and paradoxical effects on the clinical outcome of patients with candidemia. CANDIPOP Project from GEIH-GEMICOMED (SEIMC) and REIPI. Clin Microbiol Infect. 2017 Jan; 23(1):49.e1-49.e8.
PUBMED DOIDevelopment and Validation of a High-Resolution Melting Assay To Detect Azole Resistance in Aspergillus fumigatus.
Bernal-Martínez L, Gil H, Rivero-Menéndez O, Gago S, Cuenca-Estrella M, Mellado E, Alastruey-Izquierdo A. Development and Validation of a High-Resolution Melting Assay To Detect Azole Resistance in Aspergillus fumigatus. Antimicrob Agents Chemother. 2017 Nov 22;61(12). pii: e01083-17.
PUBMED DOIContenidos con Investigacion .
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Jorge Amich Elías
Científico Titular de los OPIs
Código ORCID: 0000-0002-8987-5115
Doctor en Microbiología y Genética Molecular, realizó su tesis doctoral (2010) en la Universidad de Salamanca bajo la dirección del Dr. José Antonio Calera Abad. Realizó estancias postdoctorales en la Universidad de Würzburg (Alemania) bajo la supervisión del Prof. Sven Krappmann (2011-2012) y en el Hospital Clínico de Würzbug bajo la supervisión del Prof. Andreas Beilhack (2013-2015). Entre 2016 y 2021 fue Investigador Principal en el Manchester Fungal Infection Group (MFIG, Universidad de Manchester, Reino Unido) financiado con un MRC Career Development Award. En 2022 me he incorporado al Centro Nacional de Microbiología del ISCIII gracias a un contrato de Atracción de Talento de la Comunidad de Madrid. En 2024, pasó a ser Científico Titular de los OPIs en el CNM.
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Victor Arribas Antón
Contratado posdoctoral
Código ORCID: 0000-0002-6079-8988
Doctor en Biología Funcional y Genómica por la Universidad de Salamanca (2019) bajo la dirección de la Dra. Pilar Pérez y el Dr. Pedro Coll. Disfrutó de una beca predoctoral de corta duración en la Universidad de Glasgow en Poliómica de Glasgow (Reino Unido). En 2020, obtuvo un contrato postdoctoral Torres Quevedo (apoyo de la contratación de investigadores de doctorado en fase inicial en la industria), centrándose en la producción de anticuerpos recombinantes con aplicaciones terapéuticas. En 2022, recibió un contrato postdoctoral Margarita Salas para realizar una estancia de investigación de larga duración en la Universidad Complutense de Madrid, donde trabajó en la identificación de nuevas dianas antifúngicas para C. albicans mediante proteómica. En 2025, se incorporó al ISCIII del Centro Nacional de Microbiología con un contrato financiado por un proyecto europeo.
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Ana Alastruey Izquierdo
Científica Titular de los OPIs
Código ORCID: 0000-0001-8651-4405
Doctora en microbiología por la Universidad Complutense de Madrid y Máster en Bioinformática y biología computacional por la misma universidad. Realizó su tesis doctoral en el ISCIII bajo la supervisión del Dr. Juan Luis Rodríguez Tudela en identificación molecular de hongos patógenos humanos. Realizó estancias de investigación en Holanda (Fungal Biodiversity Center, CBS-Knaw, Utrecht) y Austria (Austrian Institute of Technology). En 2010-2011 se incorporó de posdoctoral al grupo del Dr. David Perlin en el Public Health Research Institute de la Universidad de Rutgers en Estados Unidos trabajando en resistencia a antifúngicos. En 2012 y 2013 realzó estancias de investigación en el Instituto Europeo de Bioinformática (EMBL-EBI). Desde 2014 es Científico Titular en el ISCIII.
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Laura Alcázar Fuoli
Científica Titular de los OPIs
Licenciada en Bioquímica por la Universidad Autónoma de Madrid y doctorada en Biología por la Universidad Complutense de Madrid en 2006. Realizó su tesis doctoral en el Centro Nacional de Microbiología (CNM) bajo la dirección de la Dra. Emilia Mellado, en el estudio de la síntesis de Ergosterol en Aspergillus fumigatus. En el año 2012 Laura se incorporó al laboratorio de referencia en micología con un contrato de investigador de programa “Miguel Servet” después de haber trabajado durante tres años como investigadora asociada en el Imperial College de Londres. Durante ese periodo su investigación se centró en los mecanismos de adaptación al hospedador y factores de virulencia de A. fumigatus. En el año 2014 obtuvo la plaza de Científico Titular de los Organismos Públicos de Investigación ejerciendo su labor investigadora en el CNM.
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Khalil Ashraph
Predoctoral
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Leticia Bernal Martínez
Contratada Indefinida
Código ORCID: 0000-0002-1694-5522
Leticia Bernal Martínez es contratada doctor indefinida del Instituto de Salud Carlos III y tiene más de quince años de experiencia en Micología molecular. Su investigación se ha centrado en el desarrollo de nuevas técnicas diagnósticas de infección fúngica invasora.
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Beatriz Bellido Samaniego
Técnico Superior Facultativo Especialista
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Óscar Zaragoza Hernández
Profesor de Investigación de los OPIS
Código ORCID: 0000-0002-1581-0845
El Dr. Oscar Zaragoza se licenció en Biología por la Universidad Complutense de Madrid en 1995 y obtuvo su doctorado por la Universidad Autónoma de Madrid. Realizó su tesis doctoral (2000) en el CSIC bajo la dirección de la Dra. Juana María Gancedo sobre el tema de la represión del catabolito de la glucosa en Saccharomyces cerevisiae. Durante este período, también fue tutelado por el Dr. Carlos Gancedo en proyectos colaborativos, que le permitieron empezar a trabajar con la levadura patógena Candida albicans.
Tras una breve estancia postdoctoral en el mismo laboratorio, en 2001 se incorporó al laboratorio del Dr. Arturo Casadevall (Albert Einstein College of Medicine, Nueva York), donde se especializó en la investigación de mecanismos de virulencia de hongos patógenos, principalmente Cryptococcus neoformans.
En 2006 se incorporó al Centro Nacional de Microbiología del ISCIII gracias a un contrato “Ramón y Cajal” y pasó a ser científico titular en 2009. Actualmente ocupa el rango de Profesor de Investigación de los OPIs desde 2023.
Durante su carrera, ha publicado más de 140 artículos, 4 capítulos de libro y un libro de divulgación ("Los hongos microscópicos: ¿Amigos o Enemigos?"). Ha obtenido proyectos públicos y privados, y participa como CoIP de un grupo de CIBERINFEC. Ha dirigido siete tesis doctorales, y numerosos trabajos de fin de master.
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Laura Alguacil Cuéllar
Contratada predoctoral
Código ORCID: 0000-0002-7362-0214
Graduada en Biología por la Universidad Rey Juan Carlos, realizó el Máster de Microbiología y Parasitología: Investigación y Desarrollo de la Universidad Complutense de Madrid (UCM) y es experta en Metodología de la Investigación y Práctica Clínica Basada en Pruebas por la Universidad Europea Miguel de Cervantes. Durante dos años fue ayudante de investigación en el departamento de Microbiología de la Facultad de Farmacia en la UCM gracias a una Beca Empleo Joven CM. En 2023 se incorporó al ISCIII con un contrato predoctoral PFIS bajo la dirección de la Dra. Ana Alastruey Izquierdo.
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Alba Torres Cano
Contratada predoctoral FPI
Código ORCID: 0009-0008-3151-1803
Alba Torres Cano es licenciada en Biología Sanitaria por la Universidad de Alcalá de Henares (UAH), y realizó el máster "Microbiología Aplicada a la Salud Pública y Enfermedades infecciosas" de la UAH. Realizó su trabajo de fin de máster en el CNM bajo la dirección del Dr. Zaragoza en 2022, centrándose en levaduras patógenas. En ese año, se incorporó al ISCIII con un contrato predoctoral FPI bajo la dirección del Dr. Óscar Zaragoza.
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Alejandra Lora Plaza
Contratada predoctoral FPI
Código ORCID: 0009-0004-4344-1583
Alejandra Lora Plaza se graduó en Biología Sanitaria y realizó el máster en Microbiología Aplicada a la Salud Pública e Investigación en Enfermedades Infecciosas (2021) por la Universidad de Alcalá en ambos casos. Se incorporó al Departamento de Microbiología de la Facultad de Biología de la Universidad de Barcelona para la realización de sus prácticas y su trabajo fin de grado. Posteriormente, realizó el trabajo de fin de máster en el Laboratorio de Microbiología del Hospital Universitario Príncipe de Asturias. En el 2022 se unió al grupo de Salud Pública y Epidemiología del Instituto de Investigación Marqués de Valdecilla (IDIVAL), Santander, como técnico de apoyo a la investigación. En el año 2024 se incorporó al grupo de la Dra. Concha Gil en el departamento de Microbiología y Parasitología en la Facultad de Farmacia de la Universidad Complutense de Madrid centrándose en levaduras.
En el 2025 se incorporó al ISCIII con un contrato predoctoral FPI bajo la dirección del Dr. Óscar Zaragoza.
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