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Investigación
Malaria and Emerging Parasitosis
Publicaciones destacadas
Fungired. Comparative performance of the laboratory assays used by a Diagnostic Laboratory Hub for opportunistic infections in people living with HIV. AIDS. 2020 Sep 1
Medina N, Alastruey-Izquierdo A, Mercado D, Bonilla O, Pérez JC, Aguirre L, Samayoa B, Arathoon E, Denning DW, Rodriguez-Tudela JL; Fungired. Comparative performance of the laboratory assays used by a Diagnostic Laboratory Hub for opportunistic infections in people living with HIV. AIDS. 2020 Sep 1;34(11):1625-1632. doi: 10.1097/QAD.0000000000002631. PMID: 32694415.
PUBMED DOIPopulation-Based Program of filamentous fungi and Antifungal Resistance in Spain (FILPOP STUDY). Antimicrob Agents Chemother. 2013 Jul
Ana Alastruey-Izquierdo*, Emilia Mellado, Teresa Pelaez, Javier Pemán, Soledad Zapico, María Álvarez, Juan L Rodriguez-Tudela, Manuel Cuenca-Estrella Population-Based Program of filamentous fungi and Antifungal Resistance in Spain (FILPOP STUDY). Antimicrob Agents Chemother. 2013 Jul;57(7):3380-7. doi: 10.1128/AAC.01287-13. PMID: 28319466
PUBMED DOIThe global problem of antifungal resistance: prevalence, mechanisms, and management. Lancet Infect Dis. 2017 Dec
Perlin DS, Rautemaa-Richardson R, Alastruey-Izquierdo A. The global problem of antifungal resistance: prevalence, mechanisms, and management. Lancet Infect Dis. 2017 Dec;17(12. doi: 10.1016/S1473-3099(17)30316-X. PMID: 28774698.
PUBMED DOISequence Analysis of In Vivo-Expressed HIV-1 Spliced RNAs Reveals the Usage of New and Unusual Splice Sites by Viruses of Different Subtypes.
Vega Y, Delgado E, de la Barrera J, Carrera C, Zaballos Á, Cuesta I, Mariño A, Ocampo A, Miralles C, Pérez-Castro S, Álvarez H, López-Miragaya I, García-Bodas E, Díez-Fuertes F, Thomson MM. Sequence Analysis of In Vivo-Expressed HIV-1 Spliced RNAs Reveals the Usage of New and Unusual Splice Sites by Viruses of Different Subtypes. PLoS One. 2016 Jun 29;11(6):e0158525.
PUBMED DOIY155H amino acid substitution in influenza A(H1N1)pdm09 viruses does not confer a phenotype of reduced susceptibility to neuraminidase inhibitors
Perez-Sautu U, Pozo F, Cuesta I, Monzon S, Calderon A, Gonzalez M, Molinero M, Lopez-Miragaya I, Rey S, Cañizares A, Rodriguez G, Gonzalez-Velasco C, Lackenby A, Casas I. Y155H amino acid substitution in influenza A(H1N1)pdm09 viruses does not confer a phenotype of reduced susceptibility to neuraminidase inhibitors. Euro Surveill. 2014 Jul 10;19(27):14-20.
PUBMED DOIComparison of two highly discriminatory typing methods to analyze Aspergillus fumigatus azole resistance
Garcia-Rubio R, Escribano P, Gomez A, Guinea J, and Mellado E. Comparison of two highly discriminatory typing methods to analyze Aspergillus fumigatus azole resistance. Frontiers in Microbiology 2018. Jul 20;9:1626.
PUBMED DOIEvaluation of the possible influence of trailing and paradoxical effects on the clinical outcome of patients with candidemia.
Rueda C, Puig-Asensio M, Guinea J, Almirante B, Cuenca-Estrella M, Zaragoza O. Evaluation of the possible influence of trailing and paradoxical effects on the clinical outcome of patients with candidemia. CANDIPOP Project from GEIH-GEMICOMED (SEIMC) and REIPI. Clin Microbiol Infect. 2017 Jan; 23(1):49.e1-49.e8.
PUBMED DOIDevelopment and Validation of a High-Resolution Melting Assay To Detect Azole Resistance in Aspergillus fumigatus.
Bernal-Martínez L, Gil H, Rivero-Menéndez O, Gago S, Cuenca-Estrella M, Mellado E, Alastruey-Izquierdo A. Development and Validation of a High-Resolution Melting Assay To Detect Azole Resistance in Aspergillus fumigatus. Antimicrob Agents Chemother. 2017 Nov 22;61(12). pii: e01083-17.
PUBMED DOIContent with Investigacion .
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Maria Jesús Perteguer Prieto
Investigadora Titular, Jefa de grupo
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Sara Vázquez Ávila
Técnico de Laboratorio
Obtuve mi título como Técnico de Laboratorio Clínico y Biomédico en el año 2020 y en el 2021obtuve el Grado Superior de Anatomía Patológica y Citodiagnóstico. Trabajé en el Centro Andaluz de Biología Molecular y Medicina Regenerativa (Sevilla) y en el Departamento de Farmacología de la Facultad de Medicina (Universidad Complutense de Madrid). Actualmente soy Técnico de Laboratorio en el Laboratorio de Helmintos del CNM (ISCIII).
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Javier Sotillo Gallego
Científico Titular
ORCID code: 0000-0002-1443-7233
En el año 2011 obtuve mi título de doctor “cum laude” por la Universidad de Valencia. Durante mi etapa postdoctoral en la James Cook University en Australia (2012-2019) me especialicé en estudiar las interacciones parásito-hospedador usando diferentes técnicas ómicas. En 2019 volví España y comencé a trabajar en el Laboratorio de Helmintos del CNM (ISCIII) primero como Investigador Miguel Servet y más adelante como Investigador Ramón y Cajal. Actualmente soy Científico Titular en el mismo laboratorio.
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Ana Hernández González
Laboral Fijo Doctor
ORCID code: 0000-0001-6762-8175
Licenciada en Biología y doctora en Enfermedades Tropicales por la Universidad de Salamanca. Puestos ocupados con anterioridad: investigadora predoctoral en el IRNASA-CSIC (contrato JAE predoc), investigadora postdoctoral en el CNM (contrato Sara Borrell) e investigadora contratada como técnico superior en el CNM (RICET). Actualmente, personal Laboral Fijo Doctor en el laboratorio de Helmintos del CNM.
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Esther Rodríguez Pérez
Técnico de Laboratorio
ORCID code: 0000-0002-3680-7733
Obtuve mi título como Graduada en Biología Sanitaria en el año 2015 y en el año 2019 obtuve el Grado Superior de Laboratorio de Diagnóstico Clínico. De 2019 a 2022 trabajé en el Museo Nacional de Ciencias Naturales (MNCN-CSIC), en el Departamento de Biogeoquímica y Ecología Microbiana. Actualmente trabajo como Técnico de Laboratorio en el Laboratorio de Helmintos del CNM (ISCIII).
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Lourdes Castro Companioni
Ayudante de Investigación
ORCID code: 0009-0003-2746-4067
Bióloga sanitaria graduada en la Universidad de Alcalá de Henares (UAH), con master de Microbiología y Salud pública en la UAH en colaboración con el ISCIII.
List of staff
Información adicional
Despite progress, parasitic diseases remain a major challenge for humans. Its rapid and accurate detection, as well as the identification of specific genes related to virulence and/or resistance to treatments, is a necessity for management and planning control strategies.
The main objective of the group is to carry out quality, competitive and innovative research, to acquire, disseminate and apply in clinical parasitology with the ultimate goal of improving and innovating in the diagnoses, therapies and control of parasitic diseases. This general objective is implemented through external projects and collaborations with different funding sources:
- Characterization of submicroscopic malaria. National Hospital Network. (FIS-ISCIII).
- Design, optimization and validation of advanced diagnostic methods for the detection of blood parasites (Retos-MICINN).
- Control of onchocerciasis in Equatorial Guinea. CNMTrop-ISCIII (Task Force, USA).
- Characterization and control of Mansonellosis and Onchocerciasis in the Amazon region in Brazil. FIOCRUZ from Amazonas, Brazil. (Cpnqt-Brazil).
- Plasmodium knowlesi and its implication as the fifth species of human malaria. MRC, Malaysia.
- Intestinal parasitosis in Egypt from Cryptosporidium (protozoan) to Capillaria (Nematode). Cairo University and Al-Azhar University, Egypt. (MHESR, AECID).