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Investigación

Patógenos Especiales

Líneas de investigación

Contenidos con Investigacion Resistencia a Antibióticos e IRAS .

Caracterización molecular de los estafilococcus

​El Laboratorio de Referencia e investigación en Infecciones Relacionadas con la Asistencia Sanitaria dispone de un Programa de Vigilancia de Staphylococcus aureus y Estafilococos coagulasa negativa y de la siguiente cartera de servicios:

Estafilococos coagulasa negativa

Identificación:

Por secuencia del gen 16S del ARN ribosómico

Por secuencia del gen rpoB

Por secuencia del gen tuf

 

Marcadores moleculares

Perfil por PFGE

SSC

mec

MLST

 

Detección de genes

Genes mec

Genes de resistencia

Mecanismos de resistencia al linezolid

Dominio V del gen 23S ARNr

Gen rplC (riboproteína L3)

Gen rplD (riboproteína L4)

Gen rplV (riboproteína L22)

 

 

Staphylococcus aureus

Identificación:

PCR del gen Sau

Por secuencia del gen 16S del ARN ribosómico

Por secuencia del gen rpoB

Por secuencia del gen tuf

 

Marcadores moleculares

PFGE

MLST

SSC

mec

Spa-tipo

 

Detección de genes

Genes mec

Gen PVL

Toxinas exfoliativas (SST)

Toxina del Shock Tóxico (TSST)

Investigación en infecciones multirresistentes

 

La emergencia y diseminación global de cepas bacterianas de diferentes especies con resistencia a distintas clases de antibióticos (cepas multirresistentes) supone una amenaza para la eficacia del tratamiento antibiótico. El Antibiotic Resistance Global Report publicado por la Organización Mundial de la Salud en 2014 destacó altas tasas de resistencia en varias especies de bacterias patógenas en cada una de las seis regiones incluidas en el estudio (WHO; 2014). Las infecciones causadas por bacterias resistentes están asociadas a una mortalidad significativa, produciendo más de 700.000 muertes al año, y se estima que esta cifra llegará a 10 millones de muertes anuales en 2050, si no cambia la tendencia actual (Antimicrobial Resistance Rev; 2015). En 2017, la Organización Mundial de la Salud identificó las especies bacterianas frente a las que deberían implementarse nuevas medidas de tratamiento y prevención (WHO 2017). En este informe se clasificaron las especies Gram negativas multirresistentes.

Acinetobacter baumanniiPseudomonas aeruginosa y Klebsiella pneumoniae con la prioridad más alta (Priority 1: Critical). Las tasas de resistencia a los antimicrobianos de primera línea de estas bacterias Gram-negativas multirresistentes se han incrementado a nivel global durante la última década, complicando significativamente el manejo clínico de las infecciones producidas por estos microorganismos. En este contexto, nuestro grupo está desarrollando las siguientes líneas de investigación:

1. Desarrollo de vacunas para infecciones multirresistentes

Esta línea de investigación tiene como objetivo del desarrollo preclínico de vacunas profilácticas y anticuerpos monoclonales terapéuticos para infecciones producidas por bacterias Gram negativas multirresistentes de difícil manejo clínico debido a la resistencia antimicrobiana. La investigación realizada en esta línea tiene como objetivo identificar y caracterizar antígenos de las bacterias multirresistentes (Acinetobacter baumannii, Klebsiella pneumoniae y Pseudomonas aeruginosa) que sirvan para el desarrollo de anticuerpos monoclonales y vacunas a través de estudios epidemiológicos, genómicos y proteómicos.

2. Caracterización de tratamientos novedosos para infecciones multirresistentes

Esta línea de investigación tiene como objetivo identificar y caracterizar nuevos tratamientos basados en moléculas novedosas y/o combinaciones de antibióticos existentes para infecciones producidas por bacterias Gram negativas multirresistentes.  También se emplean técnicas moleculares y "omicas" para la identificación de nuevas dianas para el desarrollo de antibióticos novedosas. 

3. Desarrollo de vacunas frente a SARS-CoV-2

Debido la situación producida por la propagación del SARS-CoV-2 urge la realización de estudios que tienen como objetvo el desarrollo de vacunas profilácticas.  Nuestro grupo lidera el desarrollo de un prototipo de vacuna basado en ADN plasmídico que expresa antígenos de SARS-CoV-2 y la caracterización de la respuesta inmune inducida por esta vacuna en un modelo murino de inmunización.

Resistencia a Antibióticos

1. Resistencia a antibióticos (RA): vigilancia y epidemiología basadas en la genómica. Esta línea se centra en la vigilancia molecular y epidemiológica de patógenos prioritarios multirresistentes, integrando herramientas genómicas avanzadas para comprender su evolución, diseminación y mecanismos de resistencia, en alineación con el Centro Europeo para la Prevención y el Control de las Enfermedades (ECDC).

a) Vigilancia genómica de patógenos prioritarios. Se aborda el estudio sistemático de bacterias resistentes a antibióticos de alto impacto clínico y epidemiológico:

  • Enterobacterales productores de carbapenemasas.
  • Acinetobacter baumannii resistente a carbapenémicos.
  • Pseudomonas aeruginosa resistente a carbapenémicos.
  • Haemophilus influenzae causante de enfermedad invasiva.
  • Staphylococcus aureus resistente a meticilina (MRSA).

Las actividades incluyen:

  • Caracterización mediante secuenciación genómica completa (WGS) para identificar determinantes de resistencia, virulencia y linajes circulantes.
  • Identificación y seguimiento de clones de alto riesgo y eventos de diseminación epidémica.
  • Análisis filogenéticos para reconstruir rutas de transmisión local, nacional e internacional.
  • Estudio de elementos genéticos móviles (plásmidos, integrones, transposones) implicados en la diseminación de genes de resistencia a los antibióticos.

 

b) Estudios multicéntricos y redes colaborativas

  • Coordinación de estudios multicéntricos nacionales e internacionales para evaluar tendencias temporales y geográficas.
  • Integración en redes europeas de vigilancia genómica.
  • Comparación estandarizada de datos entre centros mediante pipelines bioinformáticos estandarizados.

c) Integración de genómica en sistemas de vigilancia

  • Desarrollo de infraestructuras para incorporar datos WGS en programas nacionales de vigilancia.
  • Generación de informes en tiempo real para apoyar medidas de control de infecciones hospitalarias.
  • Transferencia de evidencia científica a autoridades sanitarias para diseño de políticas públicas.

El objetivo estratégico es evolucionar desde una vigilancia fenotípica clásica hacia una vigilancia predictiva basada en genómica, capaz de anticipar la emergencia y expansión de nuevos mecanismos de resistencia.


2. Nuevas estrategias terapéuticas frente a bacterias multirresistentes a los antibióticos. Esta línea aborda el desarrollo de terapias innovadoras que complementen o sustituyan a los antibióticos tradicionales frente a bacterias multirresistentes.

a) Diagnóstico rápido de resistencia a antibióticos. Desarrollo de ensayos de inmunocromatografía de flujo lateral para detección rápida de carbapenemasas y otros mecanismos de resistencia directamente desde muestras clínicas, mediante generación de anticuerpos monoclonales ultrasensibles dirigidos a proteínas específicas de resistencia, para reducir el tiempo de diagnóstico y facilitar la terapia antimicrobiana dirigida.

b) Plataforma integral de análisis genómico. Diseño de una plataforma bioinformática automatizada para detección de genes y mutaciones asociadas a resistencia a partir de datos genómicos. Incorporación de algoritmos predictivos basados en aprendizaje automático para inferir fenotipo de resistencia. Integración con sistemas hospitalarios para soporte a la decisión clínica en tiempo real. El objetivo es transformar los datos genómicos en herramientas operativas para la práctica clínica.

c) Terapias basadas en oligonucleótidos. Desarrollo de oligonucleótidos antisentido capaces de bloquear la expresión de genes esenciales o determinantes de resistencia. Optimización de sistemas de difusión para permitir su entrada en bacterias extracelulares. Conjugación con bacteriocinas para mejorar especificidad y capacidad de internalización. Evaluación en modelos preclínicos de infección por patógenos multirresistentes. Esta estrategia permite modular genéticamente la bacteria sin recurrir a antibióticos convencionales.

d) Terapias celulares avanzadas (CAR-NK derivadas de iPSC). Desarrollo de células NK modificadas con receptores quiméricos (CAR) dirigidos frente a determinantes bacterianos específicos. Uso de células derivadas de iPSC (células madre pluripotentes inducidas) que permiten expansión indefinida y producción clonal estandarizada. Optimización de procesos de fabricación reproducibles y escalables, facilitando cumplimiento regulatorio. Evaluación de seguridad, especificidad y eficacia en modelos experimentales. El objetivo es explorar estrategias inmunoterapéuticas aplicadas a infecciones por bacterias multirresistentes.


 

3. Terapia con bacteriófagos y estrategias anti-persistencia. Esta línea se centra en el desarrollo y estandarización de bancos de fagos para su uso en infecciones bacterianas crónicas y en el desarrollo de estrategias anti-persistencia para erradicar subpoblaciones bacterianas tolerantes.

  • Aislamiento, caracterización genómica y funcional de bacteriófagos líticos activos frente a patógenos prioritarios (p. ej., Pseudomonas aeruginosa, Klebsiella pneumoniae, Staphylococcus aureus).
  • Creación de colecciones bien definidas, con trazabilidad, secuenciación completa y ausencia de genes de virulencia o resistencia transferibles.
  • Estandarización de protocolos de producción bajo condiciones GMP, control de calidad, estabilidad y formulación (tópica, inhalada, intravenosa). o Evaluación preclínica y clínica de cócteles de fagos y estrategias combinadas fago-antibiótico.
  • Uso de fagos con capacidad de penetración en biopelículas o modificados para expresar enzimas degradadoras de matriz extracelular.
  • Modelos in vitro e in vivo de infección crónica para evaluar eficacia terapéutica y prevenir recaídas.

El objetivo final es diseñar terapias combinadas capaces de erradicar tanto bacterias activamente replicativas como subpoblaciones tolerantes.

4. Medicina personalizada y diagnóstico avanzado en RA. Esta línea aborda la resistencia a antibióticos (RA) desde un enfoque de medicina de precisión, integrando datos clínicos, microbiológicos y genómicos para optimizar el tratamiento individualizado.

  • Integración de secuenciación genómica completa (WGS) para identificar determinantes de resistencia y virulencia en tiempo real.
  • Diseño de algoritmos de decisión clínica que combinen datos genómicos y características del paciente.
  • Desarrollo de modelos predictivos de respuesta terapéutica basados en inteligencia artificial. o Implementación de terapias dirigidas (antibióticos específicos, combinaciones racionales, uso de fagos personalizados).
  • Implementación de plataformas “point-of-care” para reducir el tiempo a tratamiento efectivo.

El objetivo es reducir el uso empírico de antibióticos de amplio espectro, mejorar resultados clínicos y disminuir la presión selectiva.

5. Impacto clínico, microbioma y resistoma humanos. Esta línea estudia cómo la hospitalización y la exposición a antibióticos modifican el microbioma intestinal y el resistoma, y cómo estos cambios influyen en la aparición de infecciones por bacterias resistentes.

a) Impacto de la hospitalización en microbioma y resistoma

  • Estudios longitudinales en pacientes hospitalizados para caracterizar cambios en diversidad microbiana mediante metagenómica.
  • Análisis del resistoma (conjunto de genes de resistencia presentes en la microbiota) antes, durante y después de la hospitalización.
  • Identificación de factores clínicos asociados a disbiosis y expansión de patógenos oportunistas.

b) Relación microbiota–RA–evolución clínica

  • Evaluación del papel de la pérdida de diversidad intestinal en la colonización por bacterias multirresistentes.
  • Estudio de transferencia horizontal de genes de resistencia dentro del microbioma.
  • Correlación entre perfiles de microbiota y desenlaces clínicos (infección, recaída, mortalidad).
  • Desarrollo de estrategias preventivas (probióticos racionales, trasplante de microbiota fecal, moduladores metabólicos) para restaurar el equilibrio microbiano y reducir riesgo de infección.

El objetivo es comprender el ecosistema microbiano humano como reservorio dinámico de resistencia a antibióticos y como diana potencial para intervenciones terapéuticas y preventivas.

Publicaciones destacadas

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Interruption of onchocerciasis transmission in Bioko Island: Accelerating the movement from control to elimination in Equatorial Guinea

5. Herrador Z, Garcia B, Ncogo P, Perteguer MJ, Rubio JM, Rivas E, Cimas M, Ordoñez G, de Pablos S, Hernández-González A, Nguema R, Moya L, Romay-Barja M, Garate T, Barbre K, Benito A. Interruption of onchocerciasis transmission in Bioko Island: Accelerating the movement from control to elimination in Equatorial Guinea. PLoS Negl Trop Dis. 2018 May 3;12(5):e0006471.

PUBMED DOI

LAMP kit for diagnosis of non-falciparum malaria in Plasmodium ovale infected patients

7. Thuy-Huong Ta-Tang, Sergio L. B. Luz, Francisco J. Merino, Isabel de Fuentes, Rogelio López-Vélez, Tatiana A. P. Almeida, Marta Lanza, Cláudia M. M. Abrahim, and José M. Rubio (2016). Atypical Mansonella ozzardi Microfilariae from an Endemic Area of Brazilian Amazonia. Am. J. Trop. Med. Hyg 95(3), 2016, pp. 633–636.

PUBMED DOI

Comparison of Imported Plasmodium ovale curtisi and P. ovale wallikeri Infections among Patients in Spain, 2005-2011.

9. Rojo-Marcos G, Rubio-Muñoz JM, Ramírez-Olivencia G, García-Bujalance S, Elcuaz-Romano R, Díaz-Menéndez M, Calderón M, García-Bermejo I, Ruiz-Giardín JM, Merino-Fernández FJ, Torrús-Tendero D, Delgado-Iribarren A, Ribell-Bachs M,Arévalo-Serrano J, Cuadros-González J (2014). Comparison of Imported Plasmodium ovale curtisi and P. ovale wallikeri Infections among Patients in Spain, 2005-2011. Emerg Infect Dis. 2014 Mar;20(3):409-16.

PUBMED DOI

Arbovirus surveillance: first dengue virus detection in local Aedes albopictus mosquitoes in Europe, Catalonia, Spain, 2015.

1. C Aranda; MJ Martínez; T Montalvo; R Eritja; J Navero-Castillejos; E Herreros; E Marqués; R Escosa; I Corbella; E Bigas; L Picart; M Jané; I Barrabeig; N Torner; S Talavera; Ana Vázquez; María Paz Sánchez-Seco; Nuria Busquets. Arbovirus surveillance: first dengue virus detection in local Aedes albopictus mosquitoes in Europe, Catalonia, Spain, 2015.Eurosurveillance. 23 - 47, 2018.

PUBMED DOI

Phylogenetic Characterization of Crimean-Congo Hemorrhagic Fever Virus, Spain

2. Eva Ramírez de Arellano; Lourdes Hernández; M José Goyanes; Marta Arsuaga; Ana Fernández Cruz; Anabel Negredo; María Paz Sánchez Seco. Phylogenetic Characterization of Crimean-Congo Hemorrhagic Fever Virus, Spain. Emerging infectious diseases. 23 - 12, pp. 2078 - 2080. 12/2017. ISSN 1080-6059

PUBMED DOI

Toscana virus infection in Catalonia (Spain).

4. Neus Cardeñosa; Diana Kaptoul; Pedro Fernández Viladrich; Carles Aranda; Fernando de Ory; Jordi Niubó; Pere Plans; Angela Domínguez; Giovanni Fedele; Antonio Tenorio; María Paz Sánchez Seco. Toscana virus infection in Catalonia (Spain). Vector borne and zoonotic diseases (Larchmont, N.Y.). 13 - 4, pp. 273 - 278. 04/2013. ISSN 1557-7759

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. Autochthonous Crimean-Congo Hemorrhagic Fever in Spain

5. Anabel Negredo; Fernando de la Calle Prieto; Eduardo Palencia Herrejón; Marta Mora Rillo; Jenaro Astray Mochales; María P Sánchez Seco; Esther Bermejo Lopez; Javier Menárguez; Ana Fernández Cruz; Beatriz Sánchez Artola; Elena Keough Delgado; Eva Ramírez de Arellano; Fátima Lasala; Jakob Milla; Jose L Fraile; Maria Ordobás Gavín; Amalia Martinez de la Gándara; Lorenzo López Perez; Domingo Diaz Diaz; M Aurora López García; Pilar Delgado Jimenez; Alejandro Martín Quirós; Elena Trigo; Juan C Figueira; Jesús Manzanares; Elena Rodriguez Baena; Luis Garcia Comas; Olaia Rodríguez Fraga; Nicolás García Arenzana; Maria V Fernández Díaz; Victor M Cornejo; Petra Emmerich; Jonas Schmidt Chanasit; Jose R Arribas. Autochthonous Crimean-Congo Hemorrhagic Fever in Spain.The New England journal of medicine. 377 - 2, pp. 154 - 161. 13/07/2017. ISSN 1533-4406

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Zika Virus Screening among Spanish Team Members After 2016 Rio de Janeiro, Brazil, Olympic Games

6. Natalia Rodriguez Valero; Alberto M Borobia; Mar Lago; Maria Paz Sánchez Seco; Fernando de Ory; Ana Vázquez; Jose Luis Pérez Arellano; Cristina Carranza Rodríguez; Miguel J Martínez; Alicia Capón; Elias Cañas; Joaquin Salas Coronas; Arkaitz Azcune Galparsoro; Jose Muñoz. Zika Virus Screening among Spanish Team Members After 2016 Rio de Janeiro, Brazil, Olympic Games. Emerging infectious diseases. 23 - 8, pp. 1426 - 1428. 08/2017. ISSN 1080-6059

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Contenidos con Investigacion Resistencia a Antibióticos e IRAS .

Listado de personal

Información adicional

1.- El estudio de zoonosis, no gastrointestinales, algunas de ellas transmitidas por vectores y/o emergente tiene por objeto:
• El desarrollo y validación de nuevas técnicas de diagnóstico y genotipado suponen un importante apoyo científico-técnico al Sistema Nacional de Salud actuando como laboratorio de referencia.
• La investigación sobre la Epidemiología Molecular de Coxiella burnetii estudia los genotipos circulantes y su asociación con las diferentes presentaciones clínicas de la fiebre Q.
• Descubrimiento de nuevos patógenos: especialmente relevante en el caso de Francisella con la descripción de F. hispaniensis, así como variantes desconocidas taxonómicamente de Bartonella, Borrelia y Rickettsia, encontradas en reservorios, vectores y muestras clínicas.
• La vigilancia en la naturaleza analiza la cinética, ciclos de transmisión y reservorios.
• Las técnicas de genotipado permiten realizar estudios de trazabilidad en caso de brotes naturales o de liberación intencionada.
• Acreditación de métodos: norma ISO15189 (muestras clínicas), ISO17025 (ambientales).
2.- El estudio de bacterias de potencial uso en bioterrorismo a través de la participación en proyectos europeos (Joint Actions: QUANDHIP, EMERGE, SHARP) permite responder de forma adecuada ante posibles situaciones de alerta sanitaria. Se ha llevado a cabo un importante desarrollo metodológico para la detección de estos agentes y se ha implementado un Sistema de respuesta rápida.

El centro está dirigido por el Dr. José Miguel Rubio Muñoz.

El Dr. José Miguel Rubio es licenciado en Ciencias Biológicas por la Universidad Autónoma de Madrid (1986) y doctor en Ciencias Biológicas por la misma universidad (1992). Realizó su tesis doctoral en el Departamento de Genética de la Universidad Autónoma de Madrid, en calidad de Profesor Asociado de Universidad (1988-1989), y en la Facultad de Biología de la Universidad de East Anglia en Norwich, Reino Unido, como Senior Research Assistant (1989-1992).
Durante su etapa postdoctoral obtuvo una Beca de la Comisión Europea dentro del Programa Human Capital and Mobility  a desarrollar en la Universidad de “La Sapienza” de Roma, Italia y el Instituto de Biología Molecular y Biotecnología en Creta, Grecia (1993-1994). Con posterioridad realizó una nueva estancia subvencionada por la OMS y la propia universidad en el departamento de Entomología de la Universidad de Wageningen, Países Bajos (1994-1996).

Desde 1997 es miembro del Instituto de Salud Carlos III (ISCIII), donde se incorpora al Departamento de Parasitología del Centro Nacional de Microbiología, como postdoctoral UE-INCO y posteriormente con una beca de la Comunidad Autónoma de Madrid (CAM). Formo parte del grupo fundador del Centro Nacional de Medicina Tropical (2003-2006)  y de la Unidad de Alertas y Emergencias 24/7 (2006-2018) y actualmente es Responsable de la Unidad de Malaria y Parasitosis Emergentes del Centro Nacional de Microbiología y forma parte, como personal investigador, del Centro de Investigación Biomédica en Red de Enfermedades Infecciosas (CIBERINFEC/ISCIII).

En su carrera científica ha sido Científico Visitante del Centro Leonidas e Marie Dean (FIOCRUZ-AMAZONAS, Manaos, Brasil) y es Consultor Externo de los Departamentos de Parasitología de la Universidad del Cairo (Egipto) y del Centro de Investigación Médica (MRC) de Kuala Lumpur (Malasia).  Además, pertenece o ha pertenecido a diferentes comités nacionales e internacionales:  Miembro del grupo de expertos para el control de malaria del Centro de Control de Enfermedades Europeo (ECDC) desde 2011; Experto-Evaluador para los programas de salud de la Comisión Europea desde 2004; Representante español (comisionado por el ISCIII y el MSC) en el Comité Científico Técnico del TDR (OMS) 2007-2008; Adjunto Focal Point  español para microbiología en el Centro de Control de Enfermedades Europeo (ECDC) desde 2012 hasta 2020; y, miembro del Comité de Ética para la Investigación del ISCIII hasta 2019.

En este periodo ha publicado más de 100 artículos en revistas indexadas internacionales, 10 capítulos de libros y ha sido coeditor de dos libros dentro del área de malaria, medicina tropical y enfermedades olvidadas. Ha participado en 58 proyectos de investigación de financiación competitiva, 20 de ellos internacionales, habiendo sido el investigador principal en 8 nacionales y en 11 internacionales como IP del proyecto o líder de WP. Además, ha dirigido cinco convenios con empresas. Actualmente tiene concedidos cuatro sexenios de investigación, presentándose este año 2025 al quinto. En el ámbito docente participa en distintos programas de postgrado en las áreas de microbiología y parasitología, habiendo dirigido siete tesis doctorales y más de 20 trabajos fin de Master o Grado, tanto a nivel nacional como internacional. 

El laboratorio de Referencia e Investigación en Resistencia a Antibióticos ofrece una amplia cartera de servicios al Sistema Nacional de Salud, las cuales pueden solicitarse en cnm-laboratorios.isciii.es. Jefe del Laboratorio: Jesús Oteo Iglesias (Punto focal Nacional de Resistencia antibiótica).

Dispone de dos programas de Vigilancia oficiales y gratuitos que engloban los ensayos ofertados ya sea como aislamientos individuales o mediante estudio de brotes. El Laboratorio utiliza asimismo técnicas de PCR en tiempo real para la detección de genes de resistencia, estas técnicas se han adaptado a un formato multiplex que permite detectar varios genes en la misma reacción. En los últimos años se han incluido metodologías basadas en la secuenciación de genomas completos para el análisis de bacterias multiresistentes (WGS).

Programa de vigilancia de Haemophilus influenzae. Responsables: María Pérez Vázquez (Punto focal Nacional de Haemophilus influenzae) y Belén Aracil. Laboratorio encargado de la identificación, estudio de sensibilidad y análisis genotípico de aislados de Haemophilus influenzae, centrándose esencialmente en la patología invasiva debida este patógeno. 

Programa de vigilancia de Resistencia a Antibióticos. Responsables: María Pérez Vázquez  y Belén Aracil (Punto focal Nacional de Resistencia antibiótica). Laboratorio encargado de la identificación, el estudio de sensibilidad antibiótica, y el diagnóstico fenotípico y genotípico de los diferentes mecanismos de resistencia a antibióticos fundamentalmente en enterobacterias y gram-negativos no fermentadores y Enterococcus spp.

Estudio de brotes. Responsables: Belén Aracil y María Pérez Vázquez. El programa incluye la caracterización de brotes nosocomiales y clones emergentes de alto riesgo mediante diferentes técnicas moleculares (tabla resumen). Éstas, nos permiten realizar estudios filogenéticos con el fin de obtener una información detallada acerca la relación entre los diferentes aislados y su trazabilidad. El objetivo final es generar datos que se transfieren a los hospitales como ayuda para la prevención o control de la propagación del brote.

Acreditación y Calidad. Responsable: Belén Aracil. El laboratorio Referencia e Investigación en Resistencia a Antibióticos ha sido de los primeros en el ISCIII en la utilización de técnicas acreditadas por la Entidad Nacional de Acreditaciones (ENAC). Este laboratorio consiguió la primera acreditación homologada de técnicas diagnósticas en 2012, programa que ha sido ampliado, de manera que en la actualidad más de la mitad de las técnicas ofrecidas al Sistema Nacional de Salud están debidamente acreditadas por ENAC.

Técnicos responsables de las técnicas realizadas en el Laboratorio: Noelia Lara Fuella y Verónica Bautista Sánchez.

En la siguiente imagen se resumen las técnicas ofrecidas al Sistema Nacional de Salud.

PROGRAMAS NOMBRE CARTERA SERVICIO PATÓGENO DETERMINACIÓN, DETECCIÓN, ANÁLISIS MÉTODOS

Programa de vigilancia de Haemophilus

Programa de vigilancia de resistencia a antibióticos.

Identificación bacteriana

Haemophilus sp.

Enterobacterias, gram-negativos no fermentadores, Enterococcus spp

Identificación bacteriana

Bioquímicos

MALDI TOF

Secuenciación de RNAr

Identificación capsular

Haemophilus influenzae

 

Identificación capsular fenotípica y genotípica

Aglutinación serológica en latex

PCR ind/multiplex

Determinación de Sensibilidad

Haemophilus sp.

Enterobacterias, gram-negativos no fermentadores, Enterococcus

 

Determinación de Sensibilidad

Microdilución                

Tiras epsilon               

Kirby Bauer

Métodos fenotípicos de detección de mecanismos de resistencia

Enterobacterias, gram-negativos no fermentadores,

 

Métodos fenotípicos de detección de mecanismos de resistencia

Discos y tabletas combinados con inhibidores                

Tiras combinadas     

Test de Hodge modificado

CabaNP                               

Inmunocromatografía CBP

Métodos genotípicos de detección de mecanismos de resistencia

Haemophilus sp.

Enterobacterias, gram-negativos no fermentadores, Enterococcus

 

ADN, PCR y secuenciación

PCR ind/multiplex

Análisis comparativo de las secuencias

Tipificación molecular/análisis filogenéticos

Haemophilus sp.

Enterobacterias, gram-negativos no fermentadores, Enterococcus

 

Corte enzimas de restricción, electroforesis

ADN, PCR y secuenciación

Preparación de librerías y secuenciación y análisis de genomas completos

 

PFGE

 

MLST

 

WGS