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Investigación
Leishmaniasis y Enfermedad de Chagas
Líneas de investigación
Publicaciones destacadas
Pediatric drug-resistant tuberculosis in Madrid family matters
7. Santiago B, Baquero-Artiago F, Mejias A, Blázquez D, Jimenez MS, Mellado-Peña MJ, EREMITA Study group. Pediatric drug-resistant tuberculosis in Madrid: family matters. The Pediatric Infectious Disease Journal. 2014; 33:345-350.
PUBMED DOIMycobacterium kumamotonense, another Member of the Mycobacterium terrae Complex Unusually Carrying Two Copies of the Ribosomal RNA Operon
8. Menéndez MC, Jiménez MS, Yubero J, García MJ. Mycobacterium kumamotonense, another Member of the Mycobacterium terrae Complex Unusually Carrying Two Copies of the Ribosomal RNA Operon. Mycobac Dis; 2014; 4:176.
DOIMycobacterium mageritense meningitis in an immunocompetent patient with an intrathecal catheter.
9. Muñoz-Sanz A, Rodríguez Vidigal FF, Vera-Tome A, Jimenez MS. Mycobacterium mageritense meningitis in an immunocompetent patient with an intrathecal catheter. Enfer Infecc Microbiol Clin. 2013; 31:59-6
PUBMED DOIMeasles virus genotype D4 strains with non-standard length M-F non-coding region circulated during the major outbreaks of 2011-2012 in Spain.
2. Gil H, Fernández-García A*, Mosquera MM, Hübschen JM, Castellanos AM, de Ory F, Masa-Calles J, Echevarría JE.Measles virus genotype D4 strains with non-standard length M-F non-coding region circulated during the major outbreaks of 2011-2012 in Spain. PLoS One. 2018 Jul. 16;13(7):e0199975. * Corresponding author.
PUBMED DOIIsolation, antigenicity and immunogenicity of Lleida Bat Lyssavirus
3. Banyard AC, Selden D, Wu G; Thorne L, Jennings D, Marston D, Finke S, Freuling CM, Mueller T, Echevarria JE, Fooks AR. Isolation, antigenicity and immunogenicity of Lleida Bat Lyssavirus. Journal of General Virology, 2018. 99(12):1590-1599
PUBMED DOIShift within age-groups of mumps incidence, hospitalizations and severe complications in a highly vaccinated population
6. López-Perea N, Masa-Callesa J, Torres de Miera MV, Fernández-García A, Echevarría JE, de Ory F, Martínez de Aragón MV. Shift within age-groups of mumps incidence, hospitalizations and severe complications in a highly vaccinated population. Spain, 1998–2014. Vaccine, 2017, 35(34): 4339-4345.
PUBMED DOIThe Complexity of Antibody Responses Elicited against the Respiratory Syncytial Virus Glycoproteins in Hospitalized Children Younger than 2 Years
2. Trento A, Rodriguez-Fernandez R, Gonzalez-Sanchez MI, Gonzalez-Martinez F, Mas V, Vazquez M, et al. The Complexity of Antibody Responses Elicited against the Respiratory Syncytial Virus Glycoproteins in Hospitalized Children Younger than 2 Years. Front Microbiol. 2017;8:2301.
PUBMED DOIPotent single-domain antibodies that arrest respiratory syncytial virus fusion protein in its prefusion state.
3. Rossey I, Gilman MS, Kabeche SC, Sedeyn K, Wrapp D, Kanekiyo M, et al. Potent single-domain antibodies that arrest respiratory syncytial virus fusion protein in its prefusion state. Nat Commun. 2017;8:14158.
PUBMED DOIRapid profiling of RSV antibody repertoires from the memory B cells of naturally infected adult donors
6. Gilman MS, Castellanos CA, Chen M, Ngwuta JO, Goodwin E, Moin SM, et al. Rapid profiling of RSV antibody repertoires from the memory B cells of naturally infected adult donors. Sci Immunol. 2016;1(6).
PUBMED DOICharacterization of a Prefusion-Specific Antibody That Recognizes a Quaternary, Cleavage-Dependent Epitope on the RSV Fusion Glycoprotein.
8. Gilman MS, Moin SM, Mas V, Chen M, Patel NK, Kramer K, et al. Characterization of a Prefusion-Specific Antibody That Recognizes a Quaternary, Cleavage-Dependent Epitope on the RSV Fusion Glycoprotein. PLoS Pathog. 2015;11(7):e1005035.
PUBMED DOIPolyclonal and monoclonal antibodies specific for the six-helix bundle of the human respiratory syncytial virus fusion glycoprotein as probes of the protein post-fusion conformation.
9. Palomo C, Mas V, Vazquez M, Cano O, Luque D, Terron MC, et al. Polyclonal and monoclonal antibodies specific for the six-helix bundle of the human respiratory syncytial virus fusion glycoprotein as probes of the protein post-fusion conformation. Virology. 2014;460-461:119-27.
PUBMED DOIBiophysical properties of single rotavirus particles account for the functions of protein shells in a multilayered virus
Jiménez-Zaragoza M., Yubero M.L., Martín-Forero E., Castón J.R., Reguera D., Luque D.*, de Pablo P.J., Rodríguez J.M. 2018. Biophysical properties of single rotavirus particles account for the functions of protein shells in a multilayered virus. eLife 7: e37295. *Corresponding author.
PUBMED DOIAcquisition of functions on the outer capsid surface during evolution of double-stranded RNA fungal viruses
Mata C.P., Luque D., Gómez-Blanco J., Rodríguez J.M., González J.M., Suzuki N., Ghabrial S.A., Carrascosa J.L., Trus B.L., Castón J.R. 2017. Acquisition of functions on the outer capsid surface during evolution of double-stranded RNA fungal viruses. PLoS Pathog. 13(12):e1006755.
PUBMED DOIStructural Insights into the Assembly and Regulation of Distinct Viral Capsid Complexes
Sarker S., C. Terrón M., Khandokar Y., Aragão D., Hardy J.M., Radjainia M., Jiménez-Zaragoza M., de Pablo P.J., Coulibaly F., Luque D., Raidal D.R., Forwood J.K. 2016. Structural Insights into the Assembly and Regulation of Distinct Viral Capsid Complexes. Nat. Commun. 7:13014. IF: 12.124; D1.
PUBMED DOIHeterodimers as the structural unit of the T=1 capsid of the fungal dsRNA Rosellinia necatrix quadrivirus 1
Luque D., Mata C.P., González-Camacho F., González J.M., Gómez-Blanco J., Alfonso C., Rivas G., Havens W.M., Kanematsu S., Suzuki N., Ghabrial S.A., Trus B.L., Castón J.R. 2016. Heterodimers as the structural unit of the T=1 capsid of the fungal dsRNA Rosellinia necatrix quadrivirus 1. J Virol. 90(24):11220-11230. IF: 4.666, Q1.
PUBMED DOISelf-assembly and characterization of small and monodisperse dye nanospheres in a protein cage
Luque D., de la Escosura A., Snijder J., Brasch M., Burnley R.J, Koay M.S.T., Carrascosa J.L., Wuite G.J.L., Roos W.H., Heck A.J.R., J.J.L.M Cornelissen, Torres T., Castón J.R. 2014. Self-assembly and characterization of small and monodisperse dye nanospheres in a protein cage. Chem. Sci.,5, 575-581. IF: 9.211, D1.
DOIContenidos con Investigacion .
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Mayte Pérez Olmeda
Científico Titular
Código ORCID: 0000-0002-7504-5321
Mayte Pérez Olmeda (Madrid, 1972) es doctora en Biología por la Universidad Complutense de Madrid (UCM) (2003) y Científico Titular del Instituto de Salud Carlos III (ISCIII) (2008). Actualmente es responsable del Laboratorio de Serología del Centro Nacional de Microbiología del ISCIII y de la Calidad del Laboratorio y del proceso de acreditación de ensayos (ENAC).
En su experiencia investigadora cuenta con el reconocimiento de 3 sexenios y 4 quinquenios de investigación.
Su actividad investigadora ha estado siempre dirigida al conocimiento de la patogénesis del VIH y en la coinfección del VIH con las hepatitis víricas (VHB y VHC). En los últimos años y desde su incorporación al Laboratorio de Serología compagina la Referencia e Investigación de diferentes patógenos relacionados con las enfermedades infecciosas y/o emergentes.
Es autora de más de 90 artículos, más de la mitad de ellos publicados en revistas del primer cuartil (68% D1) (H-index:24). Ha escrito un libro de divulgación científica sobre VIH “VIH La investigación contra la gran epidemia del siglo XX” y ha participado como ponente en diferentes congresos y reuniones científicas.
Es y ha sido Investigadora Principal y Colaborador Científico de numerosos Proyectos de Investigación nacionales e internacionales.
Actualmente forma parte del Comité Coordinador de Colaboraciones Científicas del estudio ENE-COVID, del Comité de Bioseguridad del ISCIII, del Comité de Seguridad y Salud del ISCIII y de la Comisión de Seguridad del ISCIII. Además, participa activamente en diferentes grupos de trabajo como el del Biobanco del ISCIII.
Ha participado y participa en diferentes comités y redes de investigación de:
a. Ámbito internacional:
• Punto operativo de contacto del ECDC en aspectos microbiológicos para Sarampión, Parotiditis, Rubeola, Varicela y tosferina.
• EURL IVD. Laboratorio validador de inmunoensayos frente a CMV y EBV.
b. Iniciativas de ámbito nacional.
• Red de investigación en Sida (RIS) investigadora y coordinadora de Work Packages (WPs).
• Centro de Investigación Biomédica en Red de Enfermedades Infecciosas (CIBERINFEC), con participación en diferentes WPs.En la trayectoria profesional ha dirigido distintos grupos de trabajo tanto para investigación como para referencia. En los últimos años ha coordinado el trabajo serológico de los estudios de enorme relevancia como el estudio ENE-COVID, CombiVacs, RecueVacs y el ENE-COVID Senior. Así mismo, forma parte de diferentes grupos de trabajo para la elaboración de informes y documentos relacionados con la vigilancia de diferentes enfermedades infecciosas y/o emergentes:
• Grupo de Trabajo para el Plan de eliminación de sarampión y rubeola (Ministerio de Sanidad).
• Programas de vigilancia en Enfermedades Infecciosas como la rabia, tétanos, difteria, bordetella, micoplasma, sarampión, rubeola, parotiditis, citomegalovirus, herpes simple, varicela zóster, chlamydia, rickettsia conorii, legionella y Herpes 8 y enfermedades transmitidas por vector.
• Miembro del Focal Points MMR (ECDC).Ha participado activamente en la organización de congresos y reuniones.
Compagina su labor de investigación y referencia con la docencia. Desde el 2023 es directora del Máster en Microbiología aplicada a la Salud Pública e Investigación en Enfermedades Infecciosas (UAH/ISCIII) en el que también colabora como docente y coordinadora de materias desde el 2014. En este Máster ha sido tutora y miembro del tribunal de diferentes TFMs.
En esta línea docente también es miembro del Programa de Doctorado en Ciencias Biomédicas y Salud Pública de IMIENS-UNED UNED/ISCIII desde 2020.
Participa en eventos de divulgación científica como la semana de la ciencia en el ISCIII. -
Esther Calonge Errejón
Titulado en Actividades técnicas y profesionales y facultativo en laboratorio de diagnóstico
Código ORCID: 0000-0003-2175-5237
Licenciada en Ciencias Biológicas y Doctora en Biología Molecular por la Universidad Complutense de Madrid. Investigadora en el campo de las enfermedades infecciosas y la patogénesis del VIH-1, desde la unidad de Inmunopatología del SIDA del Centro Nacional de Microbiología, centrando su actividad investigadora principalmente en estudios genéticos del VIH-1. Miembro científico de la plataforma Host Genetics en IP-lab.
Actualmente investigadora en el laboratorio de Serología Viral del CNM en el Instituto de Salud Carlos III. Facultativa especialista acreditada para la emisión de resultados diagnósticos. Desde que forma parte del laboratorio de Serología ha participado como miembro del grupo de trabajo en estudios de enorme relevancia como el estudio ENE-COVID, CombiVacs y el ENE-COVID Senior con el procesamiento de cerca de 100 mil muestras así como estudios de seroprevalencia en enfermedades infecciosas y emergentes. Responsable técnico de la validación de paneles de la OMS para diversas enfermedades infecciosas y de kits de diagnóstico para distintas empresas biotecnológicas. Tienen también formación especializada en calidad y acreditación según normas ISO.
Autora de numerosos artículos científicos de alto índice de impacto. Revisora en revistas de prestigio internacional y evaluadora en convocatorias de proyectos I+D para la FCSAI. Ha participado como científico investigador en numerosos proyectos de I+D en el campo de las enfermedades infecciosas financiados a través de convocatorias competitivas de entidades públicas y privadas
Profesora en el Máster Universitario en Microbiología aplicada a Salud Pública e Investigación en Enfermedades Infecciosas, Universidad de Alcalá Henares y tutora de trabajos fin de Master (TFMs). -
María Ángeles Murillo
Ayudante de Investigación I+D+i
Tiene una amplia experiencia en inmunoensayos, técnicas moleculares y en la recepción de muestras. Ha trabajado en diferentes laboratorios del CNM como el laboratorio de Retrovirus ampliando su experiencia a los métodos moleculares. Tiene también formación especializada en calidad y acreditación según normas ISO.
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Isabel Pérez Grajera
Técnico de Laboratorio
Graduada en Ciencias del Medioambiente (UNED) y titulación de Técnico Superior de Laboratorio de Diagnóstico Clínico. Tiene amplia experiencia en inmunoensayos, técnicas moleculares y en la recepción de muestras. Ha trabajado en otros laboratorios del CNM de virología y bacteriología. Tiene también formación especializada en calidad y acreditación según normas ISO.
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María Castillo de la Osa
Técnico de Laboratorio
Graduada en Biología (Universidad Alcalá de Henares), titulación de Técnico Superior de Laboratorio de Diagnóstico Clínico (IES Moratalaz) y Máster en Microbiología aplicada a la Salud Pública e Investigación en Enfermedades Infecciosas (Universidad Alcalá de Henares). Tiene amplia experiencia en diversas técnicas de Serología, Biología molecular y celular, Microbiología y en la recepción de muestras y manejo de la base de datos. Tiene también formación especializada en calidad y acreditación según normas ISO.
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Lucía Barbero Herranz
Técnico de laboratorio
Titulada como Técnico Superior de Laboratorio Clínico y Biomédico (IES Renacimiento) y Técnico de animalario (UNED). Ha realizado prácticas en la Bioincubadora del Hospital de Fuenlabrada y posee formación, en análisis microbiológicos, Bioconjugados, Bioseguridad y prevención de RL, y personal sanitario ante la violencia de género. Actualmente tiene un contrato de Plan de Empleo Juvenil del Ministerio de Ciencia e Innovación.
Listado de personal
Información adicional
La Unidad de Leishmaniasis y Enfermedad de Chagas da apoyo al Sistema Nacional de Salud mediante un enfoque multidisciplinar que incluye el desarrollo y validación de pruebas de diagnóstico, la caracterización molecular de los parásitos, la epidemiología molecular, los estudios de campo, así como la investigación experimental de nuevos enfoques terapéuticos y profilácticos para su control.
El laboratorio cuenta con una amplia experiencia en la caracterización de la respuesta inmune celular y humoral de la leishmaniasis y el seguimiento post-tratamiento, así como en individuos asintomáticos y en modelos animales experimentales. El laboratorio también contribuye a los estudios inmunológicos de la patogénesis de la leishmaniasis en condiciones inmunosupresoras (coinfección VIH/Leishmania, malnutrición, tratamiento inmunosupresores...). El laboratorio es Centro Colaborador de la OMS para Leishmaniasis desde 1997, dando apoyo técnico a las diversas actividades de investigación y capacitación de la OMS y participando en la evaluación de brotes de leishmaniasis humana en países endémicos.
El laboratorio también participa en la evaluación de marcadores de pronóstico de la evolución de la infección con T. cruzi y la transmisión vertical (transplacentaria), un importante problema de salud pública en nuestro país. Además lleva a cabo estudios sobre la farmacocinética de los fármacos contra la enfermedad de Chagas.